Activités / CV

COMPETENCES :
• Biologie moléculaire : PCR, RT-qPCR, clonage, mutagenèse dirigée, transcription in vitro.
• Biochimie : Expression de protéines solubles et membranaires (en système procaryote et eucaryote). Renaturation de corps d’inclusion. Solubilisation de protéines membranaires. Purification par FPLC (échangeuse d’ions, affinité, exclusion stérique) sur système Aktä et Biorad. Tests fonctionnels par résonance plasmonique de surface (Biacore), spectroscopie et dichroïsme circulaire. Cristallogenèse. Analyse par western-blot et SDS-PAGE.
• Biologie cellulaire : Culture et entretien de lignées cellulaires animales. Différentiation cellulaire. Immunofluorescence. Microcroscopie confocale.
• Informatique : Mac et PC, logiciels de bureautique, logiciels de Bio-informatique (Vector NTI, Blast, Expasy).
• Autres : Langue anglaise : compréhension écrite et orale niveau 2, expression écrite et orale niveau 1. Entretien des automates et du matériel commun. Gestion des stocks et commandes. Encadrement technique d’étudiants (du BTS au Doctorat). Veille scientifique.

EXPERIENCES PROFESSIONNELLES :
Depuis 2016
Laboratoire des Matériaux et du Génie Physique - Equipe du Pr Catherine Picart - Grenoble
Caractérisation des intéractions et des voies de signalisation dans la régénération osseuse sur biofilm. 
2013-2016
Laboratoire de Chimie Physique - Orsay - Equipe du Dr Laura Baciou
Clonage, expression (dans P. pastoris et E. coli), purification des différentes protéines (solubles et membranaires) du complexe de la NADPH oxydase. Caractérisation fonctionnelle de ce complexe par spectroscopie et dichroïsme circulaire.
2013 
Institut de Biologie Physico-Chimique - Équipe du Dr Bruno Miroux - Paris
Clonage, expression (dans S. cerevisiae), solubilisation et purification du transporteur UCP1 de rat. Caractérisation fonctionnelle de ce transporteur par spectroscopie.
2011 / 2013 
Laboratoire des protéines membranaires - Équipe du Pr Marc le Maire - Gif-sur-Yvette.
Clonage, expression (dans S. cerevisiae en fermenteur), solubilisation et purification du transporteur ADP/ATP humain. Caractérisation fonctionnelle de ce transporteur par électrophysiologie sur SSM, Thermal Shift Assay et ultracentrifugation analytique.
2010 / 2011 
Institut de Biologie Structurale - Équipe du Pr Eva Pebay-Peyroula - Grenoble
Clonage, expression (dans E. coli), solubilisation et purification du transporteur ADP/ATP humain. Production de mutants par mutagenèse dirigée. Caractérisation fonctionnelle de ce transporteur par électrophysiologie sur SSM et transport d’ATP32.
2008 / 2009 
Institut de Biologie Structurale - Équipe du Dr Dominique Housset - Grenoble.
Clonage, expression (dans E. coli) et purification de protéines solubles du système immunitaire. Production de mutants par mutagenèse dirigée. Caractérisation de leurs interactions avec des peptides viraux et tumoraux sur Biacore 3000 et par cristallogenèse.
2005 / 2007
Merial – Lyon et Silliker – Grenoble 
Culture et entretien de lignées cellulaires animales. Contrôle par cytologie et tests immunologiques
Recherche et dénombrement de micro-organismes dans les aliments.

FORMATIONS PROFESSIONNELLES :
• 2016 : Formation CNRS Culture cellulaire.
• 2015 : Formation CNRS Analyse Bioinformatique des séquences nucléiques et protéiques - Perfectionnement.
• 2014 : Formation CNRS Analyse Bioinformatique des séquences nucléiques et protéiques - Initiation.
• 2012 : Formation et habilitation CNRS à l’utilisation d’un autoclave. 
• 2010 : Formation et habilitation CEA à l’utilisation de produits radioactifs.
• 2007 : Formation MERIAL Hygiène et Sécurité, Bonnes Pratiques de Laboratoire en Biologie Cellulaire. 

COMMUNICATIONS ORALES :
• 2015 : Expression et purification du cytochrome b558. Réunion annuelle ANR. Orsay
• 2012 : Expression en levure et purification du transporteur ADP/ATP. 2e réunion annuelle ANR MIT-2M. Paris
• 2011 : Caractérisation fonctionnelle du transporteur UCP par électrophysiologie sur SSM. 1er réunion annuelle ANR MIT-2M. Grenoble

Liste des publications